cccDNA

cccDNA共有結合性環状DNA )は、一部のウイルスが細胞核内で増殖する際に生じる特殊なDNA構造であり、細胞核内に永続的に留まることがあります。cccDNAは二本鎖DNAで、線状構造から始まり、 DNAリガーゼによって共有結合性環状構造に連結されますほとんどの場合、ウイルスDNAの転写は環状構造からのみ行われます。ウイルスのcccDNAは、エピソームDNA、あるいはミニ染色体とも呼ばれます。

cccDNAはバクテリオファージで初めて記載されましたが、DNAウイルス(ポリオーマウイルス科)の感染が検出された細胞培養でも発見されました。[ 1 ] [ 2 ] cccDNAは、B型肝炎ウイルス(HBV)を含むカリモウイルス科ヘパドナウイルス科に典型的に見られます。HBVのcccDNAは、カプシド結合型弛緩環状DNA(rcDNA)の変換によって形成されます。 [ 3 ] B型肝炎感染後、cccDNAは臨床治療後も肝細胞内に残存し、まれに再活性化することがあります。存在するcccDNAの相対量は、HBV治療の指標となります。[ 4 ]

cccDNAとB型肝炎ウイルスの背景

閉鎖結合性環状DNA(cccDNA)は、細胞への感染に反応して形成される特異なDNA構造です。ゲノムDNAが細胞核に入り込み、部分的に二本鎖DNAとなったものがcccDNAに変換されます。

CccDNAは、主にB型肝炎ウイルス(HBV)の感染において注目されています。世界中で約2億5,700万人がこのウイルスに慢性感染しており、肝硬変肝細胞癌(HCC)を発症するリスクが高まっています。[ 5 ]慢性感染は、cccDNAミニ染色体が宿主肝細胞(肝細胞)の核内に残存することを特徴とします。[ 6 ]現在の治療法では、宿主肝細胞からウイルスミニ染色体を完全に除去することはできません。[ 7 ]そのため、宿主の「機能的治癒」を目指しており、そのためには転写サイレンシングによるウイルスcccDNAの遮断が必要です。[ 5 ]感染した肝細胞からcccDNAを除去しなければ、感染者を完全に治癒することはできませんが、これは現時点では不可能です。[ 8 ]

CDC推奨ワクチン接種スケジュール

HBV病原体は、高い組織特異性および種特異性を有する小型の血液感染性ウイルスであり、感染した血液または体液への曝露を通じて感染する。[ 6 ]ウイルスが感染できる唯一の細胞は肝細胞であり、感染後、血流によって肝細胞に到達する。[ 6 ]肝細胞は肝臓組織の細胞であり、タンパク質の合成と貯蔵に関与している。この疾患はワクチン接種によって予防できるが、乳児などの高リスク者は、以前にワクチン接種を受けていない場合、慢性肝疾患を発症する確率が90%にも達する可能性がある。[ 9 ]そのため、CDCは、B型肝炎ワクチンの初回投与を出生直後に行うことを推奨している。[ 10 ] CccDNAとその核内での持続性は、効果的な治療の最大の障害であり、厳格なB型肝炎ワクチン接種スケジュールの理由となっている。[ 10 ]

実際には、cccDNA を利用する生物として知られているのは B 型肝炎ウイルスだけです。より具体的には、cccDNA は肝細胞の感染に大きく寄与する反応中間体です。 [ 11 ]感染期間中の cccDNA の持続は、HBV の蔓延において重要な役割を果たしてきました。[ 11 ]研究によると、歴史的に HBV 根絶に向けての進歩がほとんどなかった主な理由は cccDNA です。[ 12 ]多くの場合、感染が治まった後でも、cccDNA がまだ検出されます。[ 12 ]現在、HBV の治療にはヌクレオチド類似体(NA) が使用され、これは 1990 年代後半に初めて臨床使用されました。[ 12 ]長年にわたりさまざまな治療技術が試されてきましたが、HBV の治療法はまだ発見されていません。研究者たちは、この原因を cccDNA を無効にできないことにあると考えています。[ 12 ]将来の治療法では、この因子を除去することに直接焦点を当てる必要があるだろう。[ 12 ]

cccDNAの特性

cccDNA の半減期時間を使用して cccDNA の半減期をモデル化するために使用できる一般的な半減期グラフ。

cccDNAは、cccDNAに関連する特定のウイルスに感染した細胞の内で安定したミニ染色体を形成することができます。 [ 13 ]核の一部として、cccDNAはヒストンおよび非ヒストンタンパク質と相互作用して、クロマチンに似た構造を形成できます。[ 14 ]宿主のクロマチンと同様に、cccDNAの転写は2つのエンハンサーと4つの異なるプロモーターの制御によって制御されます。また、転写因子コアクチベーターコリプレッサー、クロマチン修飾酵素などの複数の調節因子にも依存します。さらに、cccDNAは、ウイルス複製および5つのウイルスRNAのDNA転写のテンプレートとして機能し、ウイルス抗原の生成を可能にします。[ 13 ]

各細胞中のcccDNAコピー数を定量化することは困難です。なぜなら、cccDNAコピー数は細胞の種類や感染の種類に依存するからです。cccDNAの半減期はまだ決定されていませんが、in vitro試験では細胞の寿命と同程度の長さであることが確認されています。[ 13 ]最近のHBVに関するin vitro試験では、ヒト肝細胞( HepG2 )の半減期は40日であり、推定寿命は58日であることが示されました。ヒト肝細胞のin vivo半減期はまだ決定されていません。[ 15 ]

HBV複製におけるcccDNAの役割

CccDNAはB型肝炎ウイルス(HBV)と関連しており、ウイルスは共有結合によってプラスミドを構築します。ウイルス内の核のヒストン含有領域にはcccDNAがよく見られ、通常はクロマチンのヒストンと同様に相互作用します。細菌の特異性を決定するために利用可能なモデルは現在、初代培養ヒト肝細胞(PHH)と分化HepaRG(dHepaRG)の3種類の細胞培養タイプに限られています。[ 16 ]これらのモデルから、cccDNAの転写を介してHBVの複製が観察されました。cccDNAの根絶効率が低いため、薬物治療が妨げられているのは、こうしたモデルの不足です。[ 17 ]

HepaRGはHBV感染を成功させた最初の細胞株であり、感染はヒト肝細胞によってのみ宿主となることを実証した。[ 18 ]肝細胞様細胞を分化誘導剤に曝露した後、高レベルのcccDNAを含む既知のHBVキャリアからウイルス源を導入し、HBV表面抗原レベルを分析したところ、HepaRG細胞で感染が複製されたことが示された。[ 19 ]通常、HBVは、健常細胞と感染細胞のサザンブロット動態を介してcccDNAレベルを測定し、ドットブロットで定量化する。これらの感染細胞では、複製マーカーとして機能するcccDNAと表面抗原であるHBsAgの分泌レベルとの間に強い相関関係が認められる。[ 18 ]

生物学的機能

CccDNAは、rcDNA(緩和環状DNA)から、マイナス鎖DNAの5'末端にあるウイルスポリメラーゼの除去、プラス鎖の5'末端の除去、マイナス鎖からの短い末端冗長性の1つのコピーの除去を通じて形成される。これらの除去が行われると、プラス鎖が完成し、2つのウイルスDNA鎖のライゲーションが起こる。 [ 16 ]感染のメカニズムは、細胞自身のDNA修復酵素によって実行されると推測される、緩和環状二本鎖DNA(rcDNA)からウイルステンプレートからのcccDNAへの変換に由来する。このプロセスは、 cccDNA転写産物が正常細胞のrcDNAゲノムに逆転写されることによって起こる。rcDNAの脱プロトン化は、ポリメラーゼ連鎖反応を介してcccDNAの前駆体として機能する。[ 20 ] [ 21 ] cccDNAの形成と代謝のメカニズムの次のステップについては議論があるが、ノックアウト実験が裏付けているように、リガーゼ阻害剤が重要な役割を果たすことが知られている。DNAリガーゼ1DNAリガーゼ3はcccDNAの形成を直接減少させるが、DNAリガーゼ4は二本鎖線状DNAにおけるcccDNAの形成にのみ重要である。[ 21 ]

部分的に二本鎖になったrcDNAからcccDNAへのこの変換は、通常、肝細胞が感染したときに起こります。[ 22 ] cccDNAは、ウイルスの複製とタンパク質の生産を完了するために必要なすべての装置を生成できるため、宿主の半保存的DNA複製機構を使用する必要はありません。[ 22 ]

cccDNA生成の誘因と制御は完全には解明されていないが、約10~50個のコピーが生成されると、cccDNA生成を抑制する負のフィードバックを伴うシステムが存在する可能性があると考えられている。cccDNAプールは一度生成されると容易に維持できるため、cccDNAプールを作成するために細胞を複数回感染させる必要はない。[ 23 ] cccDNAは希釈されたり、有糸分裂によって失われたりする可能性はあるが、一般的にcccDNAは肝細胞のライフサイクル全体にわたって生存能力に影響を与えることなく存在することができる。このcccDNAの生涯にわたる持続性は、HBVに対する観察される生涯にわたる免疫応答を説明すると考えられている。[ 24 ]

免疫介在性、エピジェネティック、およびウイルス因子はすべて、cccDNA の活性に影響を及ぼすと考えられている。これらのさまざまな因子が生体内での cccDNA の活性に影響を及ぼすメカニズムの調査は、利用可能な動物宿主が限られているため、かなり限られている。[ 25 ]免疫介在性因子に関しては、研究により、炎症性サイトカインがウイルスの複製を抑制し、感染細胞内の cccDNA プールを減少させることが示されている。さらに、 cccDNA のアセチル化と脱アセチル化は、cccDNA の転写、ひいてはウイルスの複製を制御すると考えられている。アセチル化はウイルスの複製と相関することがわかっており、一方、脱アセチル化は in vitro でのウイルス複製の低下と相関することがわかっている。[ 22 ]アセチル化と脱アセチル化が生体内での cccDNA の活性に及ぼす影響を研究するには、さらなる調査が必要である。

参考文献

  1. ^ Mosevitskaia TV, Pavel'chuk EB, Tomilin NV (1976). 「ラムダファージのUV再活性化をもたらすUV誘導修復システムの基質」Genetika (ロシア語). 12 (8): 131–8 . PMID  1001892 .
  2. ^國貞 剛志; 山岸 秀次 (1984年11月). 「HeLa細胞から精製された小型多分散環状DNAの配列反復とゲノム分布」.遺伝子. 31 ( 1–3 ): 213–223 . doi : 10.1016/0378-1119(84)90212-9 . PMID 6098526 . 
  3. ^ Guo H.; D. Jiang; T. Zhou; A. Cuconati; TM Block; JT Guo (2007年11月). 「B型肝炎ウイルスの細胞内脱タンパク質化緩和環状DNAの特性:共有結合性閉環状DNA形成の中間体」 . J Virol . 81 (22): 12472– 12484. doi : 10.1128/JVI.01123-07 . PMC 2169032. PMID 17804499 .  
  4. ^ Bourne, EJ; Dienstag, JL; Lopez, VA; 他 (2007年1月). 「臨床検体からのHBV cccDNAの定量分析:抗ウイルス療法中の臨床的およびウイルス学的反応との相関」. Journal of Viral Hepatitis . 14 (1): 56– 63. doi : 10.1111/j.1365-2893.2006.00775.x . PMID 17212645. S2CID 21563920 .  
  5. ^ a bシア、ユチェン;郭海涛(2020年8月)。「B 型肝炎ウイルス cccDNA: 形成、制御、および治療の可能性」抗ウイルス研究180 104824.土井: 10.1016/j.antiviral.2020.104824PMC 7387223PMID 32450266  
  6. ^ a b c Allweiss, Lena; Dandri, Maura (2017年6月21日). 「HBV維持におけるcccDNA役割」 .ウイルス. 9 (6): 156. doi : 10.3390/v9060156 . PMC 5490831. PMID 28635668 .  
  7. ^北村宏一;クエ、ルシェン。島津みゆき。小浦、三木;石原裕樹;若江、公翔。中村 隆志ワタシ、コウイチ。脇田 隆司;村松正道(2018年6月21日)「フラップエンドヌクレアーゼ 1 は B 型肝炎ウイルスの cccDNA 形成に関与しています。 」 PLOS 病原体14 (6) e1007124。土井10.1371/journal.ppat.1007124PMC 6013022PMID 29928064  
  8. ^ Dong, J; Ying, J; Qiu, X; Zhang, M (2017年11月19日). 「HBVのcccDNAを除去するための高度な戦略」 .消化器疾患と科学. 63 (1): 7– 15. doi : 10.1007/s10620-017-4842-1 . PMID 29159681. S2CID 21656087 .  
  9. ^ 「B型肝炎に関する情報」米国疾病予防管理センター。 2020年10月6日閲覧
  10. ^ a b「18歳以下の子供と青少年に推奨される予防接種スケジュール、米国、2020年」疾病予防管理センター。 2020年10月6日閲覧
  11. ^ a b Werle-Lapostolle, Bettina; Bowden, Scott; Locarnini, Stephen; Wursthorn, Karsten; Petersen, Jorg; Lau, George; Trepo, Christian; Marcellin, Patrick; Goodman, Zachary; Delaney, William E.; Xiong, Shelly (2004年6月). 「慢性B型肝炎の自然史におけるcccDNAの持続とアデホビル・ジピボキシル療法中の減少」. Gastroenterology . 126 ( 7): 1750– 1758. doi : 10.1053/j.gastro.2004.03.018 . ISSN 0016-5085 . PMID 15188170. S2CID 16927207 .   
  12. ^ a b c d e Yang, Hung-Chih; Kao, Jia-Horng (2014年9月). 「肝細胞におけるB型肝炎ウイルスの共有結合性閉環状DNAの持続:分子メカニズムと臨床的意義」 . Emerging Microbes & Infections . 3 (9) e64. doi : 10.1038/emi.2014.64 . ISSN 2222-1751 . PMC 4185362. PMID 26038757 .   
  13. ^ a b c Allweiss, Lena; Dandri, Maura (2017年6月21日). 「HBV維持におけるcccDNAの役割」 .ウイルス. 9 (6): 156. doi : 10.3390/v9060156 . ISSN 1999-4915 . PMC 5490831. PMID 28635668 .   
  14. ^ベロニ、ローラ;ポリーチーノ、テレサ。ニコラ、フランチェスカ・デ。グエリエリ、フランチェスカ。ラファ、ジュゼッピーナ。ファンシウリ、マウリツィオ。ライモンド、ジョバンニ。レブレロ、マッシモ(2009年11月24日)。「核 HBx は HBV ミニ染色体に結合し、cccDNA 機能のエピジェネティックな制御を変更します。 」米国科学アカデミーの議事録106 (47): 19975–19979Bibcode : 2009PNAS..10619975B土井10.1073/pnas.0908365106ISSN 0027-8424PMC 2775998PMID 19906987   
  15. ^ Lythgoe, Katrina A.; Lumley, Sheila F.; Pellis, Lorenzo; McKeating, Jane A.; Matthews, Philippa C. (2020). 「慢性感染におけるB型肝炎ウイルスcccDNAの持続性の推定」 . Virus Evolution . 7 (1) veaa063. doi : 10.1093/ve/veaa063 . PMC 7947180. PMID 33732502 .  
  16. ^ a bルシフォラ, ジュリー; プロッツァー, ウルリケ (2016年4月1日). 「B型肝炎ウイルスcccDNAへの攻撃 ― B型肝炎治療の聖杯」 . Journal of Hepatology . B型肝炎ウイルスの分子生物学. 64 (1, Supplement): S41– S48. doi : 10.1016/j.jhep.2016.02.009 . ISSN 0168-8278 . PMID 27084036 .  
  17. ^ Li, Feng; Cheng, Liang; Murphy, Christopher M.; Reszka-Blanco, Natalia J.; Wu, Yaxu; Chi, Liqun; Hu, Jianming; Su, Lishan (2016年11月7日). 「HBV cccDNAの生物学調査とcccDNA標的薬の開発のためのガウシアルシフェラーゼレポーターを用いたミニサークルHBV cccDNA」 . Scientific Reports . 6 (1) 36483. Bibcode : 2016NatSR...636483L . doi : 10.1038/srep36483 . ISSN 2045-2322 . PMC 5098228. PMID 27819342 .   
  18. ^ a bグリポン、フィリップ;ルーミン、シルヴィ。アーバン、ステファン;セイエク、ジャック・ル。グレーズ、デニス。キャニー、イザベル。ギュヨマール、クレア。ルーカス、ジョゼット。トレポ、クリスチャン。グゲン=ギルーゾ、クリスティアーヌ(2002年11月26日)。「B型肝炎ウイルスによるヒト肝癌細胞株の感染」米国科学アカデミーの議事録99 (24): 15655–15660Bibcode : 2002PNAS...9915655G土井10.1073/pnas.232137699ISSN 0027-8424PMC 137772PMID 12432097   
  19. ^グリポン, フィリップ; ディオ, クリスチャン; グゲン=ギロウゾ, クリスティアンヌ (1993年2月1日). 「培養成人ヒト肝細胞におけるB型肝炎ウイルスの再現性のある高レベル感染:ポリエチレングリコールの吸着および浸透への影響」 .ウイルス学. 192 (2): 534– 540. doi : 10.1006/viro.1993.1069 . ISSN 0042-6822 . PMID 8421898 .  
  20. ^郭、海濤。「HBV cccDNA 形成の分子機構」グラントーム2020 年12 月 1 日に取得
  21. ^ a b Long, Quanxin; Yan, Ran; Hu, Jieli; Cai, Dawei; Mitra, Bidisha; Kim, Elena S.; Marchetti, Alexander; Zhang, Hu; Wang, Soujuan; Liu, Yuanjie; Huang, Ailong (2017年12月). ヘパドナウイルスの共有結合性閉環状DNA形成における宿主DNAリガーゼの役割」 . PLOS Pathogens . 13 (12) e1006784. doi : 10.1371/journal.ppat.1006784 . ISSN 1553-7374 . PMC 5747486. PMID 29287110 .   
  22. ^ a b cレブレロ、マッシモ;ポリーチーノ、テレサ。ピーターセン、ヨルグ。ベッローニ、ローラ。ライモンド、ジョバンニ。マウラ、ダンドリ(2009年9月1日)。「B型肝炎ウイルス感染におけるcccDNA機能の制御」肝臓学ジャーナル51 (3): 581–592土井: 10.1016/j.jhep.2009.05.022ISSN 0168-8278PMID 19616338  
  23. ^ Tuttleman, Jan S.; Pourcel, Christine; Summers, Jesse (1986年11月7日). 「ヘパドナウイルス感染細胞における共有結合性環状ウイルスDNAプールの形成」. Cell . 47 ( 3): 451– 460. doi : 10.1016/0092-8674(86)90602-1 . ISSN 0092-8674 . PMID 3768961. S2CID 44818698 .   
  24. ^ Nguyen, David H.; Ludgate, Laurie; Hu, Jianming (2008). 「B型肝炎ウイルスと細胞の相互作用と病因」 . Journal of Cellular Physiology . 216 (2): 289– 294. doi : 10.1002 / jcp.21416 . ISSN 1097-4652 . PMC 4386630. PMID 18302164 .   
  25. ^ダンドリ、マウラ;マルク・ルトゲヘトマン。ヴォルツ、タッシーロ。ピーターセン、ヨルク (2006 年 5 月)。「B型肝炎ウイルスの複製と病因を研究するための小動物モデルシステム」肝疾患に関するセミナー26 (2): 181–191土井: 10.1055/s-2006-939760ISSN 0272-8087PMID 16673296S2CID 260316512